Механизмы кинетохор-зависимого образования микротрубочек у Drosophila

Для выполнения научных исследований по теме "Механизмы кинетохор-зависимого образования микротрубочек у Drosophila" 1 мая 2014 года в Институте молекулярной и клеточной биологии создана Лаборатория клеточного деления (Приказ № 24 от 05.05.2014Приказы №№ 28-33 от 01.05.2014). Работой руководит профессор Римского Университета Sapienza Маурицио Гатти при поддержке гранта Правительства Российской Федерации № 14.Z50.31.0005 (Договор от 24 марта 2014 г.)


Интервью профессора Маурицио Гатти в газете “Наука в Сибири” 12.03.2014

Статья о Лаборатории клеточного деления, созданной в рамках мега-гранта в газете “Наука в Сибири” 23.12.2015
 

Область исследований:

Исследования направлены на изучение митоза, процесса деления соматических клеток эукариот, который обеспечивает точную передачу генетической информации дочерним клеткам. Правильное функционирование всех компонентов этого процесса крайне важно для развития организма. Нарушения митоза приводят к онкологическим заболеваниям и дефектам развития. При митотическом делении клетки после удвоения ДНК начинается процесс расхождения сестринских хроматид к будущим дочерним клеткам.

Расхождение осуществляется специальной высоко динамичной клеточной структурой – веретеном деления, которое соединяет каждый набор хроматид с полюсами делящейся клетки – центросомами. Веретено деления формируется из микротрубочек и в его построении задействованы продукты сотен генов. Мутации этих генов приводят к деформации веретена деления и различным нарушениям расхождения хроматид и последующего деления клетки. На данный момент изучено только небольшое количество генов, контролирующих этапы митоза. Выявление и детальная характеристика всех генов, вовлечённых в этот процесс, является актуальной задачей.

Цели и выполнение проекта :

Известно, что микротрубочки веретена деления растут как от центросом, так и от самих хромосом. Рост последних инициируется особыми структурами, формирующимися на хромосомах – кинетохорами. Знания о факторах, существенных для роста микротрубочек от хромосом и кинетохоров, на текущий момент, ограничены и фрагментарны. Один из лучших методов анализа механизмов формирования микротрубочек от кинетохоров заключается в исследовании повторного роста митотических микротрубочек после их разрушения в результате воздействия холодом. Изучение этого процесса, и вовлечённых в него генов, является целью данного исследования. В рамках данного проекта исследования проводятся на модельном организме Drosophila melanogaster. Поскольку большинство белков, необходимых для деления клеток, являются эволюционно высоко-консервативными, полученные результаты прояснят и механизмы формирования веретена деления в клетках человека, что может иметь существенное значение, в частности, для терапии рака.

На первых этапах выполнения проекта был проведен детальный анализ повторного роста микротрубочек веретена деления клеток культуры S2 Drosophila melanogaster после их деполимеризации, вызванной как обработкой клеток колцемидом, так и воздействем низких температур. Полученные данные расширили спектр методических  подходов к изучению роста микротрубочек от кинетохоров. Используя как классические, так и вновь разработанные методики, осуществляются исследования влияния РНК-интерференции генов, предположительно участвующих в росте микротрубочек веретена деления от кинетохоров, на формирование веретена деления и сам процесс деления клеток. 

Методом РНК-интерференции ведутся серии экспериментов по истощению белков-кандидатов в культивируемых клетках S2 и последующему анализу процесса клеточного деления. На данный момент завершены работы по изучению влияния РНК-интерференции генов Eb1, Klp10A, Klp59C, Klp59D, Klp61F, Klp67A, Asp, Patronin/Ssp4, Mei-38/Ssp1/D-TPX2, Mars/D-HURP, Mast|Orbit, CG7993/Non3, Borr, CG17293,  Chc, Clc, Rcd1, Rcd5 и MBD-R2 на митоз. Еще для ряда генов отработаны и апробированы системы РНК-интерференции, в текущий период ведутся эксперименты по их истощению в культуре клеток дрозофилы.

Для изучения прижизненной динамики микротрубочек веретена деления мы получили стабильную линию культуры клеток дрозофилы S2, в которой экспрессируется химерный белок EB1-GFP, маркирующий “+”-концы микротрубочек веретена деления (видео 1). Эта линия используется в экспериментах по холодовой обработке (видео 2) и обработке колцемидом (видео 3) для изучения повторного роста микротрубочек от кинотохоров методом конфокальной микрокопической съёмки.

Методом просвечивающей электронной микроскопии в рамках проекта осуществляется ультраструктурный анализ области кинетохоров на каждой стадии митоза клеток культуры S2 Drosophila melanogaster. Методика фиксации образцов для просвечивающей электронной микроскопии была адаптирована для суспензионной культуры клеток дрозофилы. Этим методом были проанализировали несколько сотен клеток дрозофилы S2, находящихся на разных стадиях митоза. В результате анализа срезов, выполненных под различными углами, было выявлено множество структурных деталей митотического деления и построен детальный портрет процесса митоза на ультраструктурном уровне. Также, методом просвечивающей электронной микросокпии ведётся изучение делящихся клеток S2 со сниженным количеством белков, по нашим данным влияющих на рост микротрубочек от кинетохоров. В таких клетках были обнаружены как дефектные пучки микротрубочек, растущих от кинетохоров, так и изменение формы кинетохоров. Используемый подход позволяет впервые детально описать на ультраструктурном уровне митоз в культивируемых клетках дрозофилы и с таким высоким разрешением изучать нарушения формирования пучков микротрубочек веретена деления, связанных с кинетохорами.

0000-0100.gif

Члены научного коллектива:


Исследования выполняются под руководством ведущего учёного Маурицио Гатти, который является одним из признанных мировых лидеров в области клеточного деления.

 

  ФИО Категория членов научного коллектива лаборатории Ученая степень SPIN-код Контакты
  Гатти Маурицио руководитель PhD, профессор 7445-6325 maurizio [dot] gattiatuniroma1 [dot] it
  Омельянчук Леонид Владимирович исследователь дбн 9664-0610 omeatmcb [dot] nsc [dot] ru
  Андреева Евгения Николаевна исследователь кбн 7778-1203 andreevaatmcb [dot] nsc [dot] ru
  Болдырева Лидия Валерьевна исследователь кбн 9878-7060 asdatmcb [dot] nsc [dot] ru
  Киселева Елена Владимировна исследователь кбн 3604-9641 elkaatbionet [dot] nsc [dot] ru
  Кожевникова Елена Николаевна исследователь кбн 7223-6684 e_zesteatyahoo [dot] com
  Пиндюрин Алексей Валерьевич исследователь кбн 6590-7589 a [dot] pindyurinatmcb [dot] nsc [dot] ru
  Струнов Антон Александрович исследователь кбн 2932-8354 strunov [dot] antonatgmail [dot] com
  Беркаева (Шварц) Мария Борисовна исследователь   9799-2952 berkaevaatmcb [dot] nsc [dot] ru
  Галимова (Перцева) Юлия Александровна исследователь   3324-0711 pertsevaatngs [dot] ru
  Иванкин Антон Вадимович исследователь   5290-7561 anton [dot] ivankinatgmail [dot] com
  Корнеева Любовь Алексеевна исследователь   9031-3867 korneeva [dot] ljubovatmcb [dot] nsc [dot] ru
  Мариловцева Екатерина Викторовна исследователь   6668-0752 star_kochabatmcb [dot] nsc [dot] ru
  Шмакова Маргарита Алексеевна исследователь   3811-2173 margarita_shmakovaatmcb [dot] nsc [dot] ru
  Яринич Любовь Александровна исследователь   6083-0085 l [dot] yarinichatmcb [dot] nsc [dot] ru
  Андерс (Мунзарова) Алина Фирдинантовна аспирант   8230-7160 alina [dot] munzarovaatmcb [dot] nsc [dot] ru
  Попова (Косарева) Юлия Владимировна аспирант   1101-4137 popovaatmcb [dot] nsc [dot] ru
  Павлова Гера Алексеевна аспирант   4665-4976 gera [dot] pavlovaatmcb [dot] nsc [dot] ru
  Разуваева Алена Викторовна аспирант   5555-5467 alena [dot] razuvaevaatmcb [dot] nsc [dot] ru
  Алексеева Анастасия Леонидовна аспирант   9741-6376

aalekseevaatmcb [dot] nsc [dot] ru

  Лещенко Анна Евгеньевна студент   4533-6610 leshchenkoanyaatgmail [dot] com
  Лебедев Михаил Олегович студент   6564-5021

m [dot] lebedevatmcb [dot] nsc [dot] ru

Публикации по теме проекта:
  1. Renda F, Pellacani C, Strunov A, Bucciarelli E, Naim V, Bosso G, Kiseleva E, Bonaccorsi S, Sharp DJ, Khodjakov A, Gatti M, Somma MP. The Drosophila orthologue of the INT6 oncoprotein regulates mitotic microtubule growth and kinetochore structure. PLoS Genet 13(5): e1006784, 2017

  2. Omelyanchuk LV, Munzarova AF. Theoretical model of mitotic spindle microtubule growth for FRAP curve interpretation. BMC Syst Biol 11(Suppl 1): 3, 2017

  3. Strunov A, Boldyreva LV, Pavlova GA, Pindyurin AV, Gatti M, Kiseleva E. A simple and effective method for ultrastructural analysis of mitosis in Drosophila S2 cells. MethodsX 3: 551-559, 2016

  4. Павлова ГА, Попова ЮВ, Мунзарова АФ, Галимова ЮА, Разуваева АВ, Ренда Ф, Сомма МП, Пиндюрин АВ, Гатти М. Факторы, обусловливающие характер повторного роста микротрубочек веретена деления после деполимеризации тубулина у Drosophila melanogaster. Acta Naturae, спецвыпуск (2), 70, 2016

  5. Попова ЮВ, Павлова ГА, Мунзарова АФ, Разуваева АВ, Ренда Ф, Сомма МП, Пиндюрин АВ, Гатти М. Исследование генетического контроля кинетохор-зависимого роста микротрубочек в культуре клеток S2 Drosophila melanogaster при помощи РНК-интерференции. Acta Naturae, спецвыпуск (2), 71, 2016
  6. Munzarova A, Popova J, Razuvaeva A, Shloma V, Gatti M, Omelyanchuk L. Accurate measurement of poleward microtubule flux in the spindle of Drosophila S2 cells. Cell Biol Int, 40: 984-990, 2016

  7. Pavlova GA, Galimova YuA, Popova YuV, Munzarova AF, Razuvaeva AV, Alekseeva AL, Berkaeva MB, Pindyurin AV, Somma MP, Gatti M, Renda F. Factors governing the pattern of spindle microtubule regrowth after tubulin depolymerization. Цитология 58: 299-303, 2016

  8. Andreyeva EN, Pechkovsky EV, Pindyurin AV, Gatti M. Pathways of spindle formation in Drosophila mitotic and meiotic cells. Цитология 58: 295-298, 2016

  9. Pindyurin AV, Gatti M. Chromosomes in the taiga. Chromosome Res, 23: 641-647, 2015

  10. Мариловцева ЕВ, Омельянчук ЛВ. Ген hrs и границы компартментов имагинального крылового диска Drosophila melanogaster. Генетика, 51: 1207–1211, 2015

  11. Мариловцева ЕВ, Дубатолова ТД, Галимова ЮА, Копыл СА, Омельянчук ЛВ. Исследование клеточной локализации Hrs и других маркеров эндосом в сперматогенезе Drosophila melanogaster с помощью химерных GFP конструктов. Цитология, 57(7): 509-517, 2015.

  12. Palumbo V, Pellacani C, Heesom KJ, Rogala KB, Deane CM, Mottier-Pavie V, Gatti M, Bonaccorsi S, Wakefield JG. Misato controls mitotic microtubule generation by stabilizing the Tubulin Chaperone Protein-1 complex. Current Biology 25(13): 1777–1783, 2015

  13. Mengoli V, Bucciarelli E, Lattao R, Piergentili R, Gatti M, Bonaccorsi S. The analysis of mutant alleles of different strength reveals multiple functions of Topoisomerase 2 in regulation of Drosophila chromosome structure. PLoS Genet 10(10): e1004739, 2014

Доклады на конференциях по теме проекта:
  1. Kiseleva E., Strunov A., Boldyreva L.V., Pindyurin A.V., Gatti M. Interactions   of   endoplasmic   reticulum   and   the   nuclear   envelope   during   mitosis   in Drosophila early embryo and S2 cells: an ultrastructural analysis. International mini-conference "Chromosomes and Mitosis 2016" 25.11.2016, Novosibirsk, Russia

  2. Pavlova G.A., Popova J.V., Andreyeva E.N., Pindyurin A.V., Gatti M. Role of the minus-end binding proteins in kinetochore-driven microtubule growth. International mini-conference "Chromosomes and Mitosis 2016" 25.11.2016, Novosibirsk, Russia

  3. Popova  J.V., Pavlova G.A., Munzarova A.F., Razuvaeva  A.V., Renda F., Somma  P., Pindyurin A.V., Gatti M. Role of Eb1, Mars, Mast and Mei-38 proteins in kinetochore-driven microtubule growth in Drosophila S2 cells. International mini-conference "Chromosomes and Mitosis 2016" 25.11.2016, Novosibirsk, Russia

  4. Razuvaeva  A.V., Pavlova G.A., Munzarova A.F.,Popova  J.V., Renda  F., Somma  P., Pindyurin A.V., Gatti M.Analysis of the involvement of kinesin-like proteins in cell division of Drosophila S2 cells. International mini-conference "Chromosomes and Mitosis 2016" 25.11.2016, Novosibirsk, Russia

  5. Munzarova A.F., Popova J.V., Razuvaeva A.V., Shloma V.V., Gatti M., Omelyanchuk L.V. Measuring  Microtubule  Flux  using  the  modification  of  a  standard  photobleaching-based method. International mini-conference "Chromosomes and Mitosis 2016" 25.11.2016, Novosibirsk, Russia

  6. Strunov A., Boldyreva L.V., Pindyurin A.V., Gatti M., Kiseleva E. Microtubule dynamics in S2 cell mitosis: an ultrastructural overview. International mini-conference "Chromosomes and Mitosis 2016" 25.11.2016, Novosibirsk, Russia

  7. Павлова Г.А., Попова Ю.В., Мунзарова А.Ф., Галимова Ю.А., Разуваева А.В., Ренда Ф., Сомма М.П., Пиндюрин А.В., Гатти М. Факторы, обусловливающие характер повторного роста микротрубочек веретена деления после деполимеризации тубулина у Drosophila melanogaster. Poster. V Съезд биохимиков России, 04.10.2016–08.10.2016, Сочи, Россия

  8. Попова Ю.В., Павлова Г.А., Мунзарова А.Ф., Разуваева А.В., Ренда Ф., Сомма М.П., Пиндюрин А.В., Гатти М. Исследование генетического контроля кинетохор-зависимого роста микротрубочек в культуре клеток S2  Drosophila melanogaster при помощи РНК-интерференции. Poster. 04.10.2016–08.10.2016, V Съезд биохимиков России, Сочи, Россия

  9. Pavlova G., Popova J., Munzarova A., Galimova J., Razuvaeva A., Renda F., Somma P. Pindyurin A., Gatti M. Genetic dissection of kinetochore-driven microtubule formation during Drosophila spindle assembly. Italian Drosophila Research Conference. 14.09.2016-16.09.2016. Bologna. Italy

  10. Pavlova G., Popova J., Munzarova A., Galimova J., Razuvaeva A., Renda F., Somma P. Pindyurin A., Gatti M. The mechanisms of Drosophila spindle assembly: The role of kinetochore-driven microtubule formation. 2nd Science of the Future Conference 20.09.2016-23.09.2016, Kazan, Russia

  11. Popova J.V., Pavlova G.A., Munzarova A.F., Renda F., Somma M.P., Pindyurin A.V., Gatti M. Genetic control of kinetochore-driven microtubule growth: An RNAi-based analysis in Drosophila S2 cells. Poster. 2nd Science of the Future Conference 20.09.2016-23.09.2016, Kazan, Russia

  12. Munzarova A.F., Popova J.V., Razuvaeva A.V., Shloma V.V., Gatti M., Omelyanchuk L.V. A new method for accurate measurement of poleward microtubule flux in metaphase spindles of Drosophila S2 cells. Poster. 2nd Science of the Future Conference 20.09.2016-23.09.2016, Kazan, Russia

  13. Omelyanchuk L.V., Munzarova A.F., Mikhailova T.Y. Theoretical model of mitotic spindle microtubule growth for FRAP curve interpretation. 10th International conference on Bioinformatics of Genome Regulation and Structure/Systems Biology "BGRS/SB-2016",22.08.2016-25.08.2016, Novosibirsk, Russia

  14. Pavlova G., Popova J., Munzarova A., Galimova J., Razuvaeva A., Renda F., Somma P., Pindyurin A., Gatti M. The role of kinetochre-driven microtubule formation in Drosophila spindle assembly. 10th International conference on Bioinformatics of Genome Regulation and Structure/Systems Biology "BGRS/SB-2016",22.08.2016-25.08.2016, Novosibirsk, Russia

  15. Strunov A.A., Boldyreva L.V., Pindyurin A.V., Gatti M., Kiseleva E. Ultrastructural anaysis of mitotic division in Drosophila S2 cells. Poster, 10th International conference on Bioinformatics of Genome Regulation and Structure/Systems Biology "BGRS/SB-2016", 22.08.2016-25.08.2016, Novosibirsk, Russia

  16. Strunov A.A., Boldyreva L.V., Pindyurin A.V., Gatti M., Kiseleva E. Ultrastructural anaysis of spindle and kinetochores in augmin-depleted Drosophila S2 cells/ Poster, 10th International conference on Bioinformatics of Genome Regulation and Structure/Systems Biology "BGRS/SB-2016", 22.08.2016-25.08.2016, Novosibirsk, Russia

  17. Omelyanchuk L.V. Flux in mitotic spindle and FRAP curve theory. International mini-conference "Chromosomes and Mitosis 2015" 16.12.2015, Novosibirsk, Russia

  18. Strunov A.A. Peering into Drosophila S2 cell mitosis: new details of nuclear envelope and microtubule ultrastructural dynamics. International mini-conference "Chromosomes and Mitosis 2015" 16.12.2015, Novosibirsk, Russia

  19. Galimova J.A. Spindle microtubule regrowth after cold- or colcemid-induced tubulin depolymerization in Drosophila S2 cells. International mini-conference "Chromosomes and Mitosis 2015" 16.12.2015, Novosibirsk, Russia

  20. Pavlova G.A. The roles of microtubule destabilizing kinesins in the mechanisms underlying kinetochore-driven microtubule growth in Drosophila S2 cells. International mini-conference "Chromosomes and Mitosis 2015" 16.12.2015, Novosibirsk, Russia

  21. Popova J.V. The roles of EB1, MAST/ORBIT, MARS/HURP and MEI-38/TPX2 in the mechanisms underlying kinetochore-driven microtubule growth in Drosophila S2 cells. International mini-conference "Chromosomes and Mitosis 2015" 16.12.2015, Novosibirsk, Russia

  22. Munzarova A.F., Omelyanchuk L.V. FRAP curve analisys and micrtubule flux in the mitotic spindle of D. melanogater S2 cells. 8th Russian congress of young biologists "Symbiose-Russia 2015" 05.10.2015-09.10.2015, Novosibirsk, Russia

  23. Pavlova G.A., Munzarova A.F., Popova J.V., Razuvaeva A.V. The role kinesin-like proteins in kinetochore-driven microtubule microtubule formation in Drosophila. Poster, 8th Russian congress of young biologists "Symbiose-Russia 2015" 05.10.2015-09.10.2015, Novosibirsk, Russia

  24. Попова Ю.В., Разуваева А.В., Мунзарова А.Ф., Павлова Г.А. Исследование механизмов, лежащих в основе кинетохор-зависимого роста микротрубочек у Drosophila melanogaster: анализ роли белков EB1, MAST, MARS и MEI-38. Стендовый доклад, VIII Всероссийский с международным участием конгресс молодых учёных-биологов "Симбиоз-Россия 2015", Новосибирск, Россия

  25. Strunov A.A., Boldyreva L.V., Andreeva E.N., Omelyanchuk L.V., Pindyurin A.V., Gatti M., Kiseleva E.V. Ultrastructure of microtubules during different stages of division of Drosophila melanogaster S2 cell culture. Poster, International Conference “Chromosome 2015” 24.08.2015-28.08.2015, Novosibirsk, Russia

  26. Renda F., Pellacani C., Bucciarelli E., Sharp D.J., Gatti M., Somma M.P. Int6 is required for proper mocrotubule dynamics at Drosophila kinetochores. Poster, International Conference “Chromosome 2015” 24.08.2015-28.08.2015, Novosibirsk, Russia

  27. Popova J.V., Razuvaeva A.V., Munzarova A.F., Pavlova G.A., Pindyurin A.V., Gatti M. Dissection of the mechanisms underlying kinetochore-driven microtubule growth: analysis of the roles of EB1, MAST/ORBIT, MARS/HURP and MEI-38/TPX2. Poster, International Conference “Chromosome 2015” 24.08.2015-28.08.2015, Novosibirsk, Russia

  28. Munzarova A.F., Pavlova G.A., Popova J.V., Razuvaeva A.V., Pindyurin A.V., Gatti M. Dissection of the mechanisms underlying kinetochore-driven microtubule growth: analysis of the roles of microtubule destabilizing kinesis. Poster, International Conference “Chromosome 2015” 24.08.2015-28.08.2015, Novosibirsk, Russia

  29. Munzarova A.F., Bessmeltsev V.P., Vileyko V.V., Omelyanchuk L.V. Microtubule flux in the mitotic spindle of D. melanogaster S2 cells and FRAP curve theory. International Conference “Chromosome 2015” 24.08.2015-28.08.2015, Novosibirsk, Russia

  30. Разуваева А.В. Изучение роли белков Klp67A и Mast в процессе кинетохор-зависимого роста микротрубочек у Drosophila melanogaster. XII Международная конференция студентов, аспирантов и молодых ученых “Перспективы развития фундаментальных наук” 21.04.2015-24.04.2015, Томск, Россия

  31. Мунзарова А.Ф. Визуализация межполярных микротрубочек веретена деления клеток дрозофилы при помощи метода FRAP. 19 Международная пущинская школа-конференция молодых ученых "Биология - наука 21 века" 20.04.2015-24.04.2015, Пущино, Россия

  32. Павлова Г.А. Поиск белков, участвующих в кинетохор-зависимом росте микротрубочек у Drosophila melanogaster. 19 Международная пущинская школа-конференция молодых ученых "Биология - наука 21 века" 20.04.2015-24.04.2015, Пущино, Россия

  33. Омельянчук Л.В. Сплайсинг-факторы как позиционные регуляторы в тканях дрозофилы. XVII Всероссийский симпозиум "Структура и функции клеточного ядра" 28.10.2014-30.10.2014, Санкт-Петербург, Россия

  34. Gatti M. Telomeres in model organisms: similarities and differences with human telomeres. The XIII Congress of the Italian Federation of Life Sciences (FISV), 24.09.2014-27.09.2014, Pisa, Italy

  35. Gatti M. The mechanisms of kinetochore-driven MT formation in Drosophila. Первая международная научная конференция "Наука будущего" 17.09.2014-20.09.2014, Санкт-Петербург, Россия

ПОВЫШЕНИЕ КВАЛИФИКАЦИИ СОТРУДНИКОВ:
  • Семинар "Инновационные технологии для исследований в клеточной биологии" (преподаватели: сотрудники ООО "Альгимед") 31.03.2016, НИИОХ СО РАН, Новосибирск, Россия

  • Практический курс "Факторы, влияющие на характер повторного роста микротрубочек митотического веретена деления после их деполимеризации" (преподаватель: сотрудник Римского университета Sapienza Ренда Ф.) 15.09.2015-16.10.2015, ИМКБ СО РАН, Новосибирск, Россия

  • Cеминары и практический курс “EMBO Practical Course: Current methods in cell biology” 14.09.2015–22.09.2015, EMBL, Heidelberg, Germany

  • Семинары и практический курс по ПЦР "NOT another PCR school 2015" (Лектор: Dr Afif Abdel Nour, Био-Рад, Франция) 15.06.2015-16.06.2015, ИЦиГ СО РАН, Новосибирск, Россия

  • Семинары и практический курс по конфокальной микроскопии "Теория и практика имиджнга в биологических исследованиях"  (преподаватели: сотрудники ООО "ОПТЭК") 26.05.2015-29.05.2015, ИЦиГ СО РАН, Новосибирск, Россия

  • Семинары и практический курс по методам пробоподготовки, концентрации и фильтрации "Интерактивная лаборатория Sartorius" (преподаватели: сотрудники ООО "Сарториус ИЦР", Новосибирск), 25.02.2015, Академпарк, Новосибирск, Россия

  • Цикл семинаров "Обработка и анализ данных на языке программирования R" (преподаватели: сотрудники ИМКБ Гончаров Ф.П., Иванкин А.В., к.б.н. Пиндюрин А.В.), 11.11.201425.11.201409.12.201403.02.201517.02.201503.03.2015 – 17.03.2015 ИМКБ СО РАН, Новосибирск, Россия

  • Семинары и практический курс "Теория и практика имиджинга в биологических исследованиях" (преподаватели: сотрудники ООО "ОПТЭК") 07.10.2014-10.10.2014, ИМКБ СО РАН, Новосибирск, Россия

  • Семинары и практический курс "Современные цифровые технологии в микроскопии для медицины и биологии" (преподаватели: сотрудники ООО "Олимпус Москва") 25.09.2014-26.09.2014, ИМКБ СО РАН, Новосибирск, Россия

  • Практический курс "Методы исследования кинетохор-зависимого образования микротрубочек у Drosophila" (преподаватели: сотрудники Римского университета Sapienza: Сомма М.П., Ренда Ф. и профессор Гатти М.) 11.04.2014-21.05.201415.10.2014-28.11.2014, Италия, Рим, Римский университет Sapienza; 15.09.2014-14.11.2014, ИМКБ СО РАН, Новосибирск, Россия

Участие лаборатории в организации школ и конференций:

25-го ноября 2016 г. в Новосибирском Академгородке прошла Международная мини-конференция “Chromosomes and Mitosis 2016”, которая была организована Институтом молекулярной и клеточной биологии СО РАН за счёт средств гранта Правительства Российской Федерации для государственной поддержки научных исследований, проводимых под руководством ведущих ученых № 14.Z50.31.0005.

16-го декабря 2015 г. в Новосибирском Академгородке прошла Международная мини-конференция “Chromosomes and Mitosis 2015”, которая была организована Институтом молекулярной и клеточной биологии СО РАН за счёт средств гранта Правительства Российской Федерации для государственной поддержки научных исследований, проводимых под руководством ведущих ученых № 14.Z50.31.0005.

В период с 24-го по 28-е августа 2015 г. в Новосибирском Академгородке прошла Международная конференция "Хромосома 2015", которая была организована Институтом молекулярной и клеточной биологии СО РАН с привлечением средств гранта Правительства Российской Федерации для государственной поддержки научных исследований, проводимых под руководством ведущих ученых № 14.Z50.31.0005.

Оборудование лаборатории:

C привлечением средств гранта Правительства Российской Федерации для государственной поддержки научных исследований, проводимых под руководством ведущих ученых № 14.Z50.31.0005, в лаборатории оборудованы на соременном уровне:

  • Помещение для работ с культурами клеток эукариот, многофункциональный микропланшетный ридер для детекции и индукции флуоресценции в живых клетках

  • Центр световой и флуоресцентной микроскопии

  • Оборудование для наработки и очистки белковых экстрактов и система для документирования гелей и блотов

  • Помещение для чистых работ с ДНК-пробами (ПЦР-бокс) и система амплификации проб в реальном времени

Методическая база лаборатории:

В лаборатории отработан широкий спектр методик, позволяющий проводить исследования на самом современном уровне:

  • работа с клеточными культурами дрозофилы и человека;
  • РНК-интерференция генов в культивируемых клетках и в тканях дрозофилы;
  • количественное определение уровня экспрессии генов (обратная транскрипция и количественная ПЦР);
  • анализ повторного роста митотических микротрубочек в культивируемых клетках и в тканях дрозофилы;
  • распознавание и анализ митотических фенотипов;
  • получение специфических антител к исследуемым белкам;
  • функциональная характеристика белок-белковых взаимодействий in vitro и in vivo.